切片染色程序通常包括以下步骤：
样本取材与固定
迅速取材，避免组织细胞成分与结构改变。
选择合适的固定液（如福尔马林、酒精等），固定液需即配即用，并确保固定液充足（通常为样本体积的20-30倍）。
固定时间根据组织类型和固定液类型进行调整，固定完成后密封容器并标记。
脱水与透明
在带盖玻璃瓶中完成脱水过程，使用不同浓度的酒精逐步脱水。
脱水完成后，使用透明剂（如二甲苯、丙酮等）进行透明处理，以使支持剂（如石蜡）易于渗入。
透明过程中需盖紧瓶盖，防止水分进入，并快速更换透明剂。
透蜡与包埋
在低温下进行透蜡，确保石蜡不凝固，保持温度稳定。
透蜡完成后，将组织块包埋于石蜡中，制成蜡块。
切片与贴片
使用切片机将蜡块切成薄片，调整切片厚度。
将切好的薄片粘贴在载玻片上，进行贴片。
染色
待切片干燥后，使用适当的有机溶剂去除支持剂。
根据需要选择不同的染色剂进行染色，如常用的苏木素和伊红染色，或其他特异性染色剂。
染色时间根据细胞类型和染色剂类型进行调整。
分化与漂洗
去除多余染料，可使用分化剂（如盐酸酒精）进行分化。
用PBS漂洗多次，彻底去除残留的染料和分化剂。
复染与封片
使用复染剂（如核复染剂）复染细胞核，并进行分化、水洗和返蓝处理。
最后用封片剂（如加拿大树胶）封片，避免气泡产生。
显微镜观察
在显微镜下观察染色效果，调整显微镜参数以获得最佳观察效果。
以上步骤适用于常规的石蜡切片染色，具体操作细节可能因实验需求和组织类型而有所不同。此外，还有其他染色方法，如冰冻切片染色、非切片法等，具体步骤也有所差异。